此種染色法由丹麥微生物學家Hans Christian Gram 於西元1884 年所創, 是最常用的細菌鑑別染色法。步驟如下:
1.初染劑(Primary Stain):初染劑乃結晶紫(crystal violet),使細菌染成紫藍色。
2.媒染劑(Mordant):乃革蘭氏碘液(Gram's Iodine),可與初染劑結合而形成不溶性複合物。所形成之結晶 紫-碘(CV-I)複合體藉以加強染料顏色,此時所有細菌均成紫黑色。
3.脫色劑(Decoloring agent):乃95%乙醇,此試劑具有脂溶性(lipid solvent) 與蛋白質脫水劑之雙重功能。其作用依微生物細胞壁所含脂肪濃度而定。[[格蘭氏 陽性菌]]之脂質含量低且細胞壁具有厚層之肽聚醣,乃保留CV-I 複合體之主要因素,因少量之脂質經乙醇作用,立刻溶解,形成細胞壁之細孔,但此細孔隨即因乙醇之脫水作用而封閉,以致緊密結合之初染劑不易移去,終於保留紫色。[[革蘭氏陰性菌]]細胞壁中之外層含高量之脂質,易為乙醇溶解,形成大孔。即使引起細胞壁蛋白之脫水也不易封閉該孔,因此有利於未結合CV-I 複合體之釋出,致使菌體成無色。
4.複染劑(Counterstain):最後試劑為番紅(Safranin),凡經上述脫色之細菌,被此染料染成紅色。因僅革蘭氏陰性菌發生脫色,故於此步驟能吸收複染劑。革蘭氏陽性菌則保留初染時之紫色。
革蘭氏碘液就是2% iodine + 3% potassium iodide 溶於 70% ethanol。
革蘭氏陽性菌與革蘭氏陰性菌的比較
性 質 |
革蘭氏陽性菌 |
革蘭氏陰性菌 |
染色結果 |
仍維持紫色 |
由紫色變為紅色 |
細胞壁組成 |
脂質含量較少(1-4%) | 脂質含量較多(11-22%) |
細胞壁結構 | 單層,且較厚(15-80 nm) | 三層,且較薄(10-15 nm) |
對鹼液的抵抗力 | 不溶於 10% KOH 中 | 可溶於 10% KOH 中 |
孢子之產生 | 常見 | 少見 |
對物理狀況之抵抗力 | 大 |
小 |
營養需求 | 多數都較複雜 | 需求簡單 |
常見的菌種 | 大多數的球菌和產孢桿菌 | 非產孢桿菌 |
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步驟
(一)抹片製備
1. 載玻片先用清潔劑洗淨浸泡於95%酒精中
2. 取純系化的單離細菌接種(E .coli)至LB 培養液中,經18 小時增殖後。
3. 取菌液均勻分散於載玻片上,可快速在酒精燈上加熱一下。
(二)染色
1.將塗抹覆以結晶紫,靜置一分鐘。
2.以蒸餾水輕洗。
3.覆以革蘭氏碘液媒染劑,靜置一分鐘。
4.以蒸餾水清洗。
5.以95%乙醇脫色,勿脫色過度,逐滴滴下,至發現結晶紫未自塗抹中釋出為度。
6.以蒸餾水輕洗。
7.以番紅或沙黃複染45 秒。
8. 以蒸餾水輕洗。
9.以吸水紙吸乾,並用油鏡觀察
注意事項
1.染色時,脫色步驟可影響抹片之製備成敗與否。切記脫色過渡時可使初染流失,使革蘭氏陽性菌成革蘭氏陰性菌。但脫色不足,則不能完全除去CV-I 複合 物,結果是革蘭氏陰性菌成革蘭氏陽性菌。
2.將玻片以蒸餾水充分輕洗,以除去剩餘之染液。
3.宜使用未超過24 小時之新鮮培養,置備抹片。因菌齡老化,尤以革蘭氏陽性 菌易失去保留初染之能力,而顯示革蘭氏易變性。此時,部份菌體染呈紫色。